病理切片的制作1．取材（1）材料新鮮：取材組織愈新鮮愈好，人體組織一般在離體后，動(dòng)物組織在處死后迅速固定，以原有的形態(tài)學(xué)結(jié)構(gòu)。（2）組織塊的大?。核〗M織塊較理想的體積為2.0cm×2.0cm×0.3cm，以使固定液能迅速而均勻地滲入組織內(nèi)部，但根據(jù)制片材料和目的不同，組織塊的較理想體積也不同，如制作病理外檢、科研切片，其組織塊可以薄取0.1～0.2cm即可，這樣可以縮短固定脫水透明的時(shí)間，若制作教學(xué)切片厚取0.3～0.5cm，這樣可以同一蠟塊制作出較多的教學(xué)切片。（3）勿擠壓組織塊:切取組織塊用的刀剪要鋒利，切割時(shí)不可來回銼動(dòng)。夾取組織時(shí)切勿過緊，以免因擠壓而使組織、細(xì)胞變形。烤片和脫蠟烤片，一般在60℃的溫箱內(nèi)烤片0.5～1小時(shí)左右，溫度過高，會(huì)引起切片細(xì)胞收縮；時(shí)間太短(少于20分鐘)，容易造成脫片。脫蠟也相當(dāng)重要，如果脫蠟不干凈，切片不易著色或著色不勻，所以，脫蠟用的二甲苯要經(jīng)常更換，一般用3道二甲苯，每500ml液體，處理500張切片后更換一次為宜。當(dāng)室溫低于18℃時(shí)，必須將切片從溫箱拿出后立即放入二甲苯中脫蠟，或?qū)⒍妆椒湃霚叵鋬?nèi)預(yù)熱（37℃左右）脫蠟，較高不得超過60℃。然后經(jīng)高濃度的酒精到低濃度的酒精洗去二甲苯，至水。常用的固定液為10％福爾馬林。筆者認(rèn)為，10％福爾馬林由于受到福爾馬林的質(zhì)量、使用時(shí)的揮發(fā)和取材時(shí)帶入的水分影響，濃度被降低致組織固定不足，而高濃度的福爾馬林，降低了對(duì)組織的穿透性，形成周圍固定好而中央固定不到的現(xiàn)象。通過實(shí)踐，本人認(rèn)為以酸性12～15％的福爾馬林。大標(biāo)本（2cm厚）一般需要6～12個(gè)小時(shí)，小標(biāo)本一般需要3～6個(gè)小時(shí)；當(dāng)室溫低18℃時(shí)，可在37℃以下的溫箱內(nèi)加溫4～6個(gè)小時(shí)。由于HE染色著色PH為3.5～4.5,中性福爾馬林對(duì)蘇木素染色有一定影響,細(xì)胞核容易發(fā)灰,核染色質(zhì)不佳。